TA克隆原理及方法
信息來(lái)源:金開(kāi)瑞 作者:genecreate 發(fā)布時(shí)間:2022-11-01 13:17:46
一、PCR產(chǎn)物的T載體克隆
(一)重組T質(zhì)粒的構(gòu)建
一.原理
外源DNA與載體分子的連接就是DNA重組,這樣重新組合的DNA叫做重組體或重組子。重組的DNA分子是在DNA連接酶的作用下,有Mg2+、ATP存在的連接緩沖系統(tǒng)中,將分別經(jīng)酶切的載體分子與外源DNA分子進(jìn)行連接。
DNA連接酶有兩種:T4噬菌體DNA連接酶和大腸桿菌DNA連接酶。兩種DNA連接酶都有將兩個(gè)帶有相同粘性末端的DNA分子連在一起的功能,而且T4噬菌體DNA連接酶還有一種大腸桿菌DNA連接酶沒(méi)有的特性,即能使兩個(gè)平末端的雙鏈DNA分子連接起來(lái)。但這種連接的效率比粘性末端的連接率低,一般可通過(guò)提高T4噬菌體DNA連接酶濃度或增加DNA濃度來(lái)提高平末端的連接效率。T4噬菌體DNA 連接酶催化DNA 連接反應(yīng)分為3 步:首先,T4 DNA 連接酶與輔因子ATP形成酶-ATP復(fù)合物;然后,酶-ATP復(fù)合物再結(jié)合到具有5’磷酸基和3’羥基切口的DNA上,使DNA腺苷化;最后產(chǎn)生一個(gè)新的磷酸二酯鍵,把切口封起來(lái)。連接反應(yīng)通常將兩個(gè)不同大小的片斷相連。因?yàn)镈NA片斷有兩個(gè)端點(diǎn),所以切割時(shí)出現(xiàn)兩種可能,一種是單酶切,另一種是雙酶切,這兩種酶切方法在基因工程操作中都經(jīng)常用到。對(duì)于單酶切來(lái)說(shuō),載體與供體的末端都相同,連接可以在任何末端之間進(jìn)行,這樣就導(dǎo)致了大量的自連接產(chǎn)物。為了減少自環(huán)的高本底,可對(duì)載體進(jìn)行5’除磷酸處理,原理是連接酶只能連接DNA片斷的3’OH末端與5’端,所以除磷后載體不會(huì)自環(huán)。一旦有外源片斷插入時(shí),由外源片斷提供5’端就能與載體進(jìn)行連接。通過(guò)這種方法可大大減少由載體的自環(huán)造成的高本底。對(duì)于雙酶切來(lái)說(shuō),無(wú)論載體與供體同一片段上都有不同的末端,這樣就避免了載體與供體的自環(huán),能使有效連接產(chǎn)物大大增加。雙酶切的另一個(gè)特點(diǎn)是能將供體分子定向連接到載體上。
連接反應(yīng)的溫度在37℃時(shí)有利于連接酶的活性。但是在這個(gè)溫度下粘末端的氫鍵結(jié)合是不穩(wěn)定的。因此采取折中的溫度,即12-16℃,連接12-16h(過(guò)夜),這樣既可最大限度地發(fā)揮連接酶的活性,又兼顧到短暫配對(duì)結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定。Taq DNA酶擴(kuò)增的PCR產(chǎn)物,其DNA雙鏈前后末端都有一個(gè)游離的A堿基,可以與pGEM-T Easy Vector 末端游離的T堿基互補(bǔ)形成環(huán)狀重組T質(zhì)粒。
二.材料與方法
1 材料
外源DNA片斷
2 儀器、用具
移液槍、碎冰
3 試劑
pMD 18-T Vector;Ligation buffer;T4 ligatease;rATP
4 方法
連接體系如下:
16℃連接過(guò)夜。
(二)重組質(zhì)粒的轉(zhuǎn)化及陽(yáng)性克隆的鑒定
1 材料
E.coli JM109菌株
2 儀器、用具
超凈工作臺(tái)、離心機(jī)、恒溫?fù)u床、恒溫培養(yǎng)箱、培養(yǎng)皿、試管、1.5ml 離心管、電泳儀、電泳槽、凝膠樣品梳、移液器
3 試劑
(1) CaCl2、LB平板(見(jiàn)附錄);SOC培養(yǎng)基(見(jiàn)附錄);SOB培養(yǎng)基
(2) RNase A1;Buffer S1;Buffer S2;Buffer S3;Buffer W1;無(wú)水乙醇的Buffer W2a
(3) 1×電泳緩沖液(TAE);溴化乙錠溶液(EB)[有毒,小心];瓊脂糖;6×加樣緩沖液
(4) 酚;氯仿;異戊醇
(5) ddH2O;10×PCR Buffer (Mg2+ plus);dNTP;M13+;M13-;TaKaRa rTaq酶
4 方法
1. 大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞的制備
(1) 取大腸桿菌JM109保存液50μl,接種于4ml LB(或SOB)液體培養(yǎng)基中,37℃,300rpm振蕩培養(yǎng)過(guò)夜,第二天取50μl 轉(zhuǎn)接到新的4ml LB(或SOB)液體培養(yǎng)基中擴(kuò)大培養(yǎng)3h至OD600=0.35~0.4,在無(wú)菌操作臺(tái)上取1ml菌液于1.5ml離心管中,冰浴10min。
(2) 4℃,5000rpm離心2min,去上清液。
(3) 加入750μl預(yù)冷的0.1M CaCl2重懸菌體,冰浴30min。
(4) 4℃,5000rpm離心2min,棄上清液。
(5) 加入100μl 冰冷的0.1M CaCl2輕輕重懸菌體,冰浴2h后,4℃保存?zhèn)溆谩?/div>
(一)、PCR產(chǎn)物的TA克隆
2. 重組DNA的轉(zhuǎn)化
(1) 將含Amp、X-Gal、IPTG的LB平板37℃預(yù)熱。
(2) 于100μl感受態(tài)細(xì)胞中加入10μl連接產(chǎn)物,冰浴30min。
(3) 將離心管轉(zhuǎn)入42℃水浴,熱沖擊90秒,然后不要搖動(dòng)離心管,迅速將其放在冰上2min。
(4) 在離心管中加入SOC培養(yǎng)基300μl,槍頭混勻,37℃、150rpm溫和搖振60min。
(5) 將200μl 轉(zhuǎn)化菌液均勻地涂布于含50mg/ml Amp、20mg/ml X-gal、200mg/ml IPTG 的LB平板上,37℃倒置培養(yǎng)過(guò)夜,挑選白色菌落進(jìn)行鑒定。
注意事項(xiàng):
① 制備感受態(tài)細(xì)胞的全部操作均須于冰浴操作,同時(shí)注意近火無(wú)菌操作,防止感受態(tài)細(xì)胞受雜菌污染。
② 42℃熱處理時(shí)很關(guān)鍵,轉(zhuǎn)移速度要快,且溫度要準(zhǔn)確。
③ 菌液涂皿操作時(shí),應(yīng)避免反復(fù)來(lái)回涂布,因?yàn)楦惺軕B(tài)細(xì)菌的細(xì)胞壁有了變化,過(guò)多的機(jī)械擠壓涂布會(huì)使細(xì)胞破裂,影響轉(zhuǎn)化率。
3. 重組質(zhì)粒的鑒定
方案一 菌落PCR
(1) 制備PCR混合液:
(2) 用經(jīng)滅菌的10μl槍頭(不用牙簽)挑去白色菌落,迅速地使挑取物溶在上述混合液中
(3) 蓋上離心管得蓋子,在沸水上溫育10 min。
(4) 將步驟 ⑶ 的樣品冷卻至室溫,離心數(shù)秒,然后于管中加入TaKaRa rTaq酶0.25ul。
(5) 按以下條件進(jìn)行PCR反應(yīng):94℃預(yù)變性3min;然后進(jìn)行30個(gè)循環(huán)反應(yīng),其溫度循環(huán)條
件為:94℃變性1min,57℃退火1min,72 ℃延伸1min;循環(huán)結(jié)束后72℃再延伸5min。
(6) 取5μl PCR產(chǎn)物在1%瓊脂糖凝膠上進(jìn)行電泳檢測(cè)。
方案二 質(zhì)粒PCR
1. 堿裂解法少量制備質(zhì)粒DNA
(1) 用離心管收集4ml在LB培養(yǎng)基(含Amp)中培養(yǎng)過(guò)夜的菌液,14000rpm離心30秒,棄盡上清。
(2) 用250μl已加入RNase A1的Buffer S1充分懸浮細(xì)菌沉淀。
(3) 加入250μl Buffer S2,溫和但充分地上下翻轉(zhuǎn)混合4-6次,此步驟不宜超過(guò)5min。
*Buffer S2使用后應(yīng)立即蓋緊瓶蓋,以免空氣中的CO2中和Buffer S2中的NaOH,降低溶菌效率。
(4) 加入400μl Buffer S3,溫和地上下翻轉(zhuǎn)8-10次,室溫靜置2min,14000rpm離心10min。
*若離心后凝結(jié)塊未沉淀到離心管底部,應(yīng)再上下翻轉(zhuǎn)數(shù)次,12000g離心3min。
(5) 將DNA-prep Tube置于2-ml Microfuge Tube中,將步⑷中的混合液移入DNA-prep Tube中,5500rpm離心1min。
(6) 棄濾液,將DNA-prep Tube置回到原2-ml Microfuge Tube中,加入500μl Buffer W1,5500rpm離心1min。
(7) 棄濾液,將DNA-prep Tube置回到原2-ml Microfuge Tube中,加入700μl已加無(wú)水乙醇的Buffer W2,5500rpm離心1min,以同樣的方法再用700μl已加無(wú)水乙醇的Buffer
W2洗滌一次。
(8) 棄濾液,將DNA-prep Tube置回到原2-ml Microfuge Tube中,14000rpm離心1min。
(9) 連濾液一并棄掉收集管,將DNA-prep Tube 置于一新的1.5ml 離心管中,在silica 膜
中央加入25-30μl Eluent或去離子水。
(10) 室溫靜置2 min,14000rpm離心1min洗脫DNA。
(11) 取5μL樣品,1%瓊脂糖凝膠電泳初步篩選重組轉(zhuǎn)化子。
2. 抽提純化質(zhì)粒DNA酚、氯仿抽提可以去除堿裂解法制備的質(zhì)粒DNA中殘留的蛋白質(zhì)。
(1) 加TE稀釋質(zhì)粒DNA溶液至300μL。
(2) 加等體積的酚:氯仿:異戊醇(25:24:1),震蕩混勻,靜置3min。
(3) 14000rpm 離心5min,吸上清液,加等體積的酚:氯仿:異戊醇(25:24:1),混勻,靜置3min。
(4) 14000rpm離心5min,吸上清液,加等體積的氯仿:異戊醇(24:1),混勻,靜置3min。
(5) 14000rpm離心5min,吸上清液,加2.5倍體積預(yù)冷的無(wú)水乙醇,混勻后-20℃放置15min,沉淀質(zhì)粒DNA。
(6) 14000rpm離心13min,棄上清液,沉淀加入200μL 70%乙醇洗滌一次,室溫干燥,用20μL去離子雙蒸水溶解質(zhì)粒DNA沉淀,-20℃保存待用。
(7) 取5μl樣品,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)純化結(jié)果。
3. 質(zhì)粒PCR
(1) PCR反應(yīng)體系如下:
(2) PCR 擴(kuò)增反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性3min;然后進(jìn)行30 個(gè)循環(huán)反應(yīng),其溫度循環(huán)條件為:
94℃變性1min,57℃退火1min,72 ℃延伸1min;循環(huán)結(jié)束后72℃再延伸5min。
(3) 取5μl PCR產(chǎn)物于1%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳檢測(cè),方法與試驗(yàn)二相同。
二、PCR產(chǎn)物的克隆
PCR產(chǎn)物克隆大致分為兩類(lèi),即平頭連接和粘頭連接。
平頭連接是將制備好的平頭載體和補(bǔ)平或削平的PCR產(chǎn)物直接進(jìn)行連接。載體可用EcoR V或Sma I切成平頭;PCR產(chǎn)物純化后,可以在22℃用DNA聚合酶I作用30min(利用該酶所具有的3’→5’外切酶活性和5’→3’的聚合酶活性)。如果要求不高,PCR產(chǎn)物也可不加處理。如果使用Stratagene公司的pfu DNA聚合酶或New England Biolabs公司的Vent DNA聚合酶,這兩種酶有5’→3’校對(duì)能力,擴(kuò)增出來(lái)的PCR產(chǎn)物已經(jīng)是平頭,可以不作平端處理。平端連接的一個(gè)顯而易見(jiàn)的缺陷是連接效率低下,即使使用很高單位的連接酶,或在反應(yīng)體系中加入PEG 8000,也只能很有限地提高效率。
粘頭連接也可以大致分為兩類(lèi),一類(lèi)粘頭連接是用某種方法,在載體和PCR產(chǎn)物上產(chǎn)生長(zhǎng)的可互補(bǔ)的粘性末端。最普遍的方法是在引物的5’端加入一段某種限制酶的識(shí)別序列。如果兩個(gè)引物選用不同的限制性?xún)?nèi)切酶識(shí)別序列,就可以做到定向連接。另一類(lèi)利用部分PCR產(chǎn)物3’端帶有一個(gè)凸出的dAMP的特性,構(gòu)建3’端帶有凸出的dTMP的載體。一般采用的方法是先把載體用某種限制性?xún)?nèi)切酶消化成平頭,在70℃或72℃下在只加入一種dNTP、即dTTP的反應(yīng)體系中用Taq DNA聚合酶處理半小時(shí)(也有人報(bào)道處理1~2小時(shí)能提高克隆效率,這樣加T反應(yīng)會(huì)更徹底)。也可以用末端轉(zhuǎn)移酶來(lái)完成加T反應(yīng)。載體自連、PCR產(chǎn)物串連可以忽略。如果使用ddTTP,效果會(huì)更好。這種方法一般稱(chēng)為加T/A法克隆,比平頭連接效率高50~100倍。
(一)、PCR產(chǎn)物的TA克隆
1. TA克隆構(gòu)建原理:TA克隆系統(tǒng)由Invitrogen公司(San Diego,CA)發(fā)展而來(lái)的商業(yè)性試劑盒,它用于PCR產(chǎn)物的克隆和測(cè)序。其原理是利用Taq酶能夠在PCR產(chǎn)物的3’末端加上一個(gè)非模板依賴(lài)的A,而T載體是一種帶有3’T突出端的載體,在連接酶作用下,可以快速地、一步到位地把PCR產(chǎn)物直接插入到質(zhì)粒載體的多克隆位點(diǎn)(MCS)中。
2.操作步驟
⑴ 連接反應(yīng)一般在滅菌的0.5ml離心管中進(jìn)行。
⑵ 10μl體積反應(yīng)體系如下:
①取T載體1μl (50ng),加入等摩爾數(shù)PCR產(chǎn)物 。
②加入含ATP的10×Buffer 1μl,T4 DNA連接酶合適單位,用ddH2O 補(bǔ)足至10μl 。
⑶ 稍加離心,通常為14-16℃水浴連接8-14hr,或4℃過(guò)夜。
⑷ 轉(zhuǎn)染,藍(lán)白斑篩選同前。
(二)、注意事項(xiàng)
1.要獲得目的基因的TA克隆,PCR產(chǎn)物的特異性要好。
2.PCR產(chǎn)物在TA克隆前要通過(guò)純化。
3.在PCR產(chǎn)物回收、純化過(guò)程中防止外來(lái)DNA污染。
PCR產(chǎn)物的TA克隆
通過(guò)PCR的方法擴(kuò)增目的基因片斷的過(guò)程中,由于往往不清楚目的基因的DNA序列,獲得的目的片斷通常需要通過(guò)TA克隆的方法,重組到T-載體中,通過(guò)序列測(cè)定清楚DNA序列。由于在PCR過(guò)程中,使用的DNA聚合酶不同,往往分為2種情況:(1)使用不同的Taq酶,在PCR擴(kuò)增循環(huán)結(jié)束后,加上72℃10分鐘一個(gè)過(guò)程,Taq酶可以在擴(kuò)增產(chǎn)物的3末端加上A,因此PCR產(chǎn)物回收純化后可以和T載體直接連接。(2)使用高保真的DNA聚合酶,如pfu酶,由于其不能在擴(kuò)增產(chǎn)物的3末端加上A,得到的DNA序列為鈍端,因此,需要在回收純化后進(jìn)行加A的過(guò)程,通常是以PCR回收產(chǎn)物為模板,加上一定量的普通Taq酶和反應(yīng)液,加入dATP(或dNTP), 72℃ 10分鐘,然后將加A產(chǎn)物直接用于TA連接。
pMD 18-T Vector是一種高效克隆PCR產(chǎn)物 (TA Cloning)的專(zhuān)用載體。它是TaKaRa獨(dú)自研究開(kāi)發(fā),由pUC18載體改建而成的。在pUC18載體的多克隆位點(diǎn)處的Xba I 和Sal I識(shí)別位點(diǎn)之間插入了EcoR V 識(shí)別位點(diǎn),用EcoR V進(jìn)行酶切反應(yīng)后,再在兩側(cè)的3'端添加“T”而成。因大部分耐熱性DNA聚合酶反應(yīng)時(shí)都有在PCR產(chǎn)物的3'末端添加一個(gè)“A”的特性,所以使用本制品可大大提高PCR產(chǎn)物的連接、克隆效率。本制品是以最為常用的pUC18載體為基礎(chǔ)研制而成,所以它具有同pUC18載體完全相同的功能。此外,本制品中的高效連接液Ligation Solution I 可以在極短的時(shí)間內(nèi) (30分鐘-1小時(shí))完成連接反應(yīng),大大地方便了實(shí)驗(yàn)操作。另外,本制品中還含有Control Insert (500 bp),可用于Control反應(yīng)。
用途:克隆PCR產(chǎn)物。對(duì)克隆后的PCR產(chǎn)物用M13 Primers進(jìn)行DNA測(cè)序。
α互補(bǔ)和藍(lán)白篩選的原理:許多載體(包括pMD18-T)都具有一段大腸桿菌β半乳糖苷酶的啟動(dòng)子和編碼其N(xiāo)端氨基酸(α肽鏈)的片斷基因。宿主具有編碼β半乳糖苷酶的C端基因。當(dāng)二者產(chǎn)物組合在一起,就具有活性酶的產(chǎn)生,此現(xiàn)象稱(chēng)為α互補(bǔ)。由α互補(bǔ)形成的具有功能活性的β半乳糖苷酶,可以用X-gal顯色測(cè)定出來(lái),它能將無(wú)色的化合物Xgal切割成半乳糖和藍(lán)色底物。當(dāng)外源DNA片斷插入到多克隆位點(diǎn)后,就會(huì)破壞α肽鏈的閱讀框,從而不能合成與受體菌內(nèi)的β半乳糖苷酶相互補(bǔ)的活性α肽鏈,而導(dǎo)致不能形成功能活性的β半乳糖苷酶,因此含有重組質(zhì)粒載體的克隆往往是白色的,而沒(méi)有插入外源片斷的則是藍(lán)色的。
實(shí)驗(yàn)內(nèi)容:
試劑
pMD 18-T Vector試劑盒,或自己PCR擴(kuò)增回收純化的片段,T4DNA鏈接酶。IPTG,X-gal,LB培養(yǎng)基等。
200mg/ml的IPTG 過(guò)濾除菌
20mg/ml的X—gal 溶于二甲基甲酰胺,避光保存。
操作步驟
1. 在微型離心管中制備下述連接反應(yīng)液,全量為10 ml。
pMD 18-T Vector 1ml*
control insert DNA 1ml*
H20 3ml
ligation solution I 5ul
l進(jìn)行實(shí)驗(yàn)也可得到滿(mǎn)意的結(jié)果。實(shí)際操作時(shí),可按實(shí)驗(yàn)需要使用適量的T載體。?* 取0.5
2. 16℃反應(yīng)30分鐘 (過(guò)夜反應(yīng)也不影響連接效率)。
l)中。?3. 全量 (10ml) 轉(zhuǎn)化至JM109感受態(tài)細(xì)胞 (100
4. 在含有40ml 20mg/ml的X-Gal、4ml 200mg/ml 的IPTG、50-100mg/ml Amp的L-瓊脂平板培養(yǎng)基上培養(yǎng),形成單菌落。計(jì)數(shù)白色、藍(lán)色菌落。
5. 挑選白色菌落,使用PCR法確認(rèn)T載體中插入片段的長(zhǎng)度大小。
注意事項(xiàng):
1. Ligation Solution I 請(qǐng)于冰中融解。
2. 在進(jìn)行克隆時(shí),Vector DNA和Insert DNA的摩爾比一般為:1: 2 ~ 10。在本制品中, pMD18-T Vector1 ml (50 ng) 的摩爾數(shù)約為0.03 pmol,Control Insert DNA 1ml (50 ng) 的摩爾數(shù)約為0.15pmol。
3. 克隆時(shí)使用的Insert DNA片段 (PCR 產(chǎn)物) 盡量進(jìn)行切膠回收純化,PCR產(chǎn)物中的短片段DNA(甚至是電泳也無(wú)法確認(rèn)的非特異性小片段)、殘存引物等雜質(zhì)都會(huì)影響TA克隆的效率。
4. 按照本實(shí)驗(yàn)操作進(jìn)行連接后,直接進(jìn)行轉(zhuǎn)化時(shí)的連接液不要超過(guò)20 ml。當(dāng)進(jìn)行轉(zhuǎn)化的DNA用量較大或準(zhǔn)備進(jìn)行電轉(zhuǎn)化時(shí),需對(duì)連接液進(jìn)行乙醇沉淀,純化DNA后再進(jìn)行轉(zhuǎn)化。
5. 連接反應(yīng)請(qǐng)?jiān)?6℃下進(jìn)行,溫度升高 (>26℃) 較難形成環(huán)狀DNA。
6. 連接效率偏低時(shí),可適當(dāng)延長(zhǎng)連接時(shí)間至數(shù)小時(shí)。
7. 感受態(tài)細(xì)胞可使用適合于pUC系列載體的感受態(tài)細(xì)胞,如:JM109,DH5a等。
相關(guān)問(wèn)題
怎樣提高pMD18-T Vector的克隆效率?
1. 純化PCR產(chǎn)物。切膠回收的PCR片段最好
2. 除去殘存的引物等雜質(zhì)。
3. DNA片段的立體結(jié)構(gòu)、DNA片段的長(zhǎng)短都會(huì)影響克隆效率。一般情況下,大片段DNA的克隆效率(連接效率與轉(zhuǎn)化效率)小于短片段DNA,在使用大片段DNA的連接液進(jìn)行轉(zhuǎn)化時(shí),建議采用電轉(zhuǎn)化方法。
PCR產(chǎn)物難以插入載體,為什么?
1. 確認(rèn)PCR反應(yīng)使用的DNA聚合酶在PCR產(chǎn)物的3'端是否附加了"A"。有些DNA聚合酶擴(kuò)增的PCR產(chǎn)物是平端,如使用本公司的Pyrobest DNA聚合酶 (TaKaRa Code: DR005)等擴(kuò)增得到的PCR產(chǎn)物不能直接用于TA克隆;PCR產(chǎn)物保存時(shí)間不要過(guò)長(zhǎng), 長(zhǎng)時(shí)間保存的PCR產(chǎn)物會(huì)脫去末端的"A"堿基。
2. PCR產(chǎn)物中短片段雜質(zhì)DNA太多,這時(shí)應(yīng)切膠回收純化DNA片段,回收時(shí)PCR產(chǎn)物不要在紫外線(xiàn)下暴露時(shí)間過(guò)長(zhǎng)。
3. 確認(rèn)感受態(tài)細(xì)胞的轉(zhuǎn)化效率,使用的感受態(tài)細(xì)胞的轉(zhuǎn)化效率最好大于108 cfu/mg pUC118 DNA。
4. 確認(rèn)Ligation Solution I 的連接效率是否降低,多次反復(fù)凍融會(huì)降低的Ligation Solution I 連接效率。
5. 確認(rèn)抗生素的濃度是否過(guò)大。
6. 最好使用新配制的平板培養(yǎng)基。
轉(zhuǎn)化后的菌落全為藍(lán)色 (或淡藍(lán)色),為什么?
插入的PCR片段較短(小于500 bp),且插入片段沒(méi)有影響lacZ基因的讀框時(shí),平板培養(yǎng)基上出現(xiàn)的菌落有可能呈現(xiàn)藍(lán)色。
插入的PCR產(chǎn)物進(jìn)行測(cè)序時(shí),可使用何種引物?
本制品的載體來(lái)源于pUC18載體。因此,用于pUC18載體測(cè)序的引物都可以使用。
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