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「十問十答」酵母雜交通關攻略,全方位交流貼
信息來源:金開瑞 作者:genecreate 發布時間:2021-11-17 18:55:49
酵母雜交通關攻略
Q:利用去除激活域的轉錄因子X作為誘餌,篩選到互作蛋白Y。再利用X的全長蛋白導入AD載體,Y導入BD載體,共轉AH109的結果顯示不互作。怎么解析?
A:這個問題可以從兩個方面分析:1.確保第一次共轉化驗證是否是陽性,用Y2H菌株替換AH109試試,AH109菌株相對更容易產生假陽性;2.確保初次驗證是陽性結果,第二次驗證是陰性結果,猜測可能是融合的相應的BD和AD的結構域蛋白包裹了誘餌或者獵物蛋白結構域,因為酵母表達系統是真核系統,表達的蛋白是具有結構的非線性的構象,如果蛋白分子量不大,可以采用誘餌和獵物蛋白兩次串聯方式的構建,或者某個重要結構域重復串聯。
Q:如果誘餌可以直接激活報告基因,該如何處理?
A:為保證誘餌蛋白功能的完整性,首先我們會考慮用3’AT/ABA進行背景抑制,但是由于這兩種試劑對酵母生長具有較大的毒性,后續可能會影響文庫篩選,因此在3’AT超過15mM,ABA超過1200ng/ml時我們會考慮將誘餌蛋白進行截斷,通過查閱文獻和相關數據庫,截去轉錄激活的區域,需要注意的是,截去的這一部分很有可能會影響到互作結果。
Q:酵母單雜誘餌啟動子我該選擇全長還是核心區域?
A:全長:優點:更接近于自然條件下的啟動環境;缺點:有時候過于長,導致構建具有一定的難度,更可能的產生自激活現象;
預測的核心元件(<20bp):優點:核心元件用于后續的EMSA驗證試驗,對核心位點進行突變驗證啟動效果是否減弱,相對全長啟動子而言突變的區域較少操作更為方便;缺點:核心元件雖然是啟動的核心區域,但是啟動子的其他區域也可能是作為輔助元件而存在的,如果缺少這些部分就是非自然條件下的環境,可能產生假陰性;
Q:膜系統功能驗證是怎么做?
A:NMY51(PBT3-N-bait+post1-NubaI)此為功能驗證組,NubaI為野生型的ubiquitin的N端結構,保留了原始的三個I氨基酸結構,可以在不需要兩個蛋白產生相互作用的情況下兩個C端和N端的ubiquitin結構域結合在一起產生具有功能的ubiquitin,從而激活下游的報告基因。結論:在二缺平板上正常生長,說明共轉化成功,并在缺陷TDO+X-a-Gal的平板上顯藍色說明我們的bait構建的讀碼框正確(也就是我們構建的誘餌擴譜結構可以滿足篩選的需要)。并且我們的ubiquitin系統是存在功能的。
Q:膜蛋白酵母雙雜交過程需要注意的問題與細節?
A:膜蛋白的篩選是采用共轉化的方式進行的,篩選的假陽性率相對核蛋白的mating方式篩選假陽性率要低一些,但是共轉化篩選對轉化效率有要求,不然會產生假陰性。如果采用化學轉化對感受態轉化效率有一定的要求,至少達到10的4次方,感受態細胞的溶氧的提到(裝液量不超過1/5)對感受態的效率提高有幫助。電轉化感受態保存10%的甘油,轉化參數800v,15m轉化效率可以到10的5次方到6次方。
Q:請給個預測靶蛋白的網站,植物。
A:http://domine.utdallas.edu/cgi-bin/Domine
https://string-db.org/cgi/input.pl?sessionId=ksdvF3MraTE8&input_page_active_form=single_sequence
Q:相對其他公司而言,金開瑞在酵母雜交業務上具有什么樣的優勢?
A:從文庫構建來說:
文庫構建方式靈活:根據樣本的類型,提供的樣本量等方面考慮,可采用smart,geteway,infusion體外重組和T4體外連接等方式進行文庫構建;
文庫片段大小可控:根據客戶想要研究的蛋白類型大小控制片段的大小,以提高篩選到目標蛋白的可能性。如白細胞介素,生長因子類的小分子蛋白;轉錄因子,信號通路類的分子量稍大一些的蛋白;
單雙雜文庫通用:構建一種類型的文庫,可同時用于單雙雜篩選;
對于文庫篩選來說:
篩庫方式多樣:可采用matting或共轉的方式進行文庫篩選;
互作強弱可控化:提高(降低)篩選壓力,用于篩選出強(弱)相互作用的蛋白。
陽性結果進一步驗證:文庫篩選出的陽性結果,可進行點對點驗證進一步排除假陽性。
Q:酵母雜交年末有活動嗎?
A:有,建庫、篩庫、點對點都有活動,趕緊聯系您的對接銷售了解詳情吧。
Q:金開瑞所提到的三框文庫和均一化文庫具體指什么?與普通文庫相比有什么優勢嗎?
A:三框:氨基酸對應三個密碼子,文庫中CDNA的片段大小是隨機的,讀碼框也是隨機的,例如ATG,有可能是從A開始翻譯,也有可能是從T或G開始翻譯,這種情況下就只會出現一個正確的讀碼,三框通過人為的引入一個和兩個堿基,使每個移碼的基因都能正確的被讀出來,這樣得到的文庫即為一個相對較為完整。
均一化:組織樣本中有些基因mRNA含量會很高,而有些基因含量會很低。均一化主要是將高峰度的mRNA通過人為的處理將其在總樣本中的占比降下來,這樣低豐度的mRNA的占比自然就會升高。如果客戶感興趣的基因恰好屬于低豐度mRNA,那么在實現MRNA的均一性后,文庫篩選更有可能的篩出客戶的目的功能基因。要注意的是均一化不建議用于研究特殊處理后的樣本(如,病毒/細菌侵害,水脅迫等)。
Q:進行酵母雜交文庫篩選時得到的陽性結果,而進行點對點驗證卻出現陰性結果,是什么原因造成的呢?
A:可能有以下原因:
1) 酵母雜交本身也是存在假陽性的情況,有可能這兩個基因根本不互作,這樣在進行單獨的點對點驗證時自然也不會產生互作;
2) 有些互作為瞬時互作,在文庫篩選時可能捕捉導了互作,而在兩個基因進行單獨驗證時由于互作時間的原因,最終導致結果顯示為陰性;
3) 有些互作為間接互作,可能需要依靠第三個基因的作用,促進這兩個基因的互作。
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